Сообщение об ошибке
Notice: Undefined index: und в функции citing_article_block_content() (строка 196 в файле /fs/www/izvestiya/sites/all/modules/custom/citing_an_article/citing_an_article.module).Образец для цитирования:
Утешев В. К., Каурова С. А., Шишова Н. В., Крамарова Л. И., Гахова Э. Н. Гипотермическое хранение ооцитов амфибий. Как долго можно сохранять овулированные ооциты травяной лягушки (Rana temporaria) (Ranidae, Amphibia)? // Современная герпетология. 2025. Т. 25, вып. 3. С. 221-225. DOI: https://doi.org/10.18500/1814-6090-2025-25-3-4-221-225
Гипотермическое хранение ооцитов амфибий. Как долго можно сохранять овулированные ооциты травяной лягушки (Rana temporaria) (Ranidae, Amphibia)?
В настоящее время наблюдается недопустимо высокий темп сокращения биоразнообразия позвоночных животных и, в первую очередь, амфибий. Данная ситуация требует принятия экстренных мер для спасения исчезающих видов этих животных. Одна из них – развитие вспомогательных репродуктивных технологий, в том числе технологии криоконсервации и создания криобанков репродуктивных клеток (сперматозоидов и ооцитов). Однако технологии криоконсервации, успешно применяемые для криобанков сперматозоидов, до сих пор не удается адаптировать для сохранения ооцитов амфибий. Это подстегнуло интерес к исследованию возможности гипотермического хранения ооци-тов амфибий при низких положительных температурах. Задачей данной статьи является рассмотрение и анализ результатов гипотермического хранения овулированных ооцитов бесхвостых амфибий. Анализ литературы свидетельствует, что длительность хранения овулированных ооцитов лягушек в каких-либо водных растворах не превышает десятков часов. Длительность хранения ооцитов «сухим» способов в закрытых бюксах возрастает до 9 дней, а их сохранность в тушках самок может достигать 9 – 10 суток. Применение усовершенствованного «сухого» метода с использованием газовых смесей под давлением, увеличивает срок хранения ооцитов до 12 – 15 дней. Максимальная длительность (до 2 – 2.5 месяцев) наблюдалась при хранении ооцитов в яйцеводах живых лягушек.
Anastas Z. M., Byrne P. G., O’Brien J. K., Hobbs R. J., Upton R., Silla A. J. The increasing role of short-term sperm storage and cryopreservation in conserving threatened amphibian species. Animals, 2023, vol. 13, no. 13, pp. 2094– 2098. https://doi.org/10.3390/ani13132094
Ananjeva N. B., Uteshev V. K., Orlov N. L., Ryabov S. A., Gakhova E. N., Kaurova S. A., Kramarova L. I., Shishova N. V., Browne R. K. Comparison of the modern reproductive technologies for amphibians and reptiles. Russian Journal of Herpetology, 2017, vol. 24, no. 4, pp. 1–16.
Browne R. K., Clulow J., Mahony M. Short-term storage of cane toad (Bufo marinus) gametes. Reproduction, 2001, vol. 121, pp. 167–173.
Clulow J., Clulow S. Cryopreservation and other assisted reproductive technologies for the conservation of threatened amphibians and reptiles: Bringing the ARTs up to speed. Reproduction, Fertility and Development, 2016, vol. 28, iss. 8, pp. 1116–1132.
Clulow J., Upton R., Trudeau V. L., Clulow S. Amphibian assisted reproductive technologies: Moving from technology to application. In: Comizzoli P., Brown J., Holt W., eds. Reproductive Sciences in Animal Conservation. Advances in Experimental Medicine and Biology. Cham, Springer, 2019, pp. 413–463. https://doi.org/10.1007/978-3-030-23633-5_14
Derakhshan Z., Nokhbatolfoghahai M., Zahiri S. Cryopreservation of Bufotes viridis embryos by vitrification. Cryobiology, 2017, vol. 75, pp. 60–67. https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2017.02.003
Edwards D. L., Mahony M. J., Clulow J. Effect of sperm concentration, medium osmolality, and oocyte storage on artificial fertilisation success in a myobatrachid frog (Limnodynastes tasmaniensis). Reproduction, Fertility and Development, 2004, vol. 16, iss. 3, pp. 347–354.
Elinson R. P. Fertilization in amphibians: The ancestry of the block to polyspermy. International Review of Cytology, 1986, vol. 101, pp. 59–100.
Gagarinskiy E. L., Uteshev V. K., Fesenko E. E. Jr. Prolonged hypothermic storage of oocytes of the European common frog Rana temporaria in a gas mixture of oxygen and carbon monoxide. PLoS ONE, 2023, vol. 18, no. 7, article no. e0288370. https://doi.org/10.1371/journal. pone.0288370
González-Del-Pliego P., Freckleton R. P., Edwards D. P., Koo M. S., Scheffers B. R., Pyron R. A., Jetz W. Phylogenetic and trait-based prediction of extinction risk for data-deficient amphibians. Current Biology, 2019, vol. 29, iss. 9, pp. 1557–1563. https://doi.org/10.1016/ j.cub.2019.04.005
IUCN 2024. IUCN Red List of Threatened Species. 2024. Available at: https://www.iucnredlist.org/resources/summary-statistics (accessed December 23, 2024).
Pavlov D. A., Emel’yanova N. G. Fertility of ovulated oocytes after their short-term storage in water in several species of marine tropical fishes. Journal of Ichthyology, 2008, vol. 48, iss. 8, pp. 655–664. https://doi.org/10.1134/S0032945208080122
Scheele B. C., Pasmans F., Skerratt L. F., Berger L., Beukema W., Acevedo A. A., Burrowes P. A., Carvalho T., Catenazzi A., De la Riva I., Fisher M. C., Flechas S. V., Foster C. N., Frías-Álvarez P., Garner T. W. J., Gratwicke B., Guayasamin J. M., Hirschfeld M., Kolby J. E., Kosch T. A. et al. Amphibian fungal panzootic causes catastrophic and ongoing loss of biodiversity. Science, 2019, vol. 363, no. 6434, pp. 1459–1463. https://doi.org/10.1126/science.aav0379
Tiersch T. R., Green C. C. Cryopreservation in Aquatic Species. Baton Rouge, LA, World Aquaculture Society, 2011. 439 p.
Uteshev V. K., Gakhova E. N., Kramarova L. I., Shishova N. V., Kaurova S. A., Browne R. K. Refrigerated storage of European common frog Rana temporaria oocytes. Cryobiology, 2018, vol. 83, pp. 56–59. https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2018.06.004
Uteshev V. K., Gakhova E. N., Kramarova L. I., Shishova N. V., Kaurova S. A. New approaches to collecting reproductive material from amphibians for its use in artificial fertilization. Current Studies in Herpetology, 2019, vol. 19, iss. 1–2, pp. 46–55 (in Russian). https://doi.org/10.18500/1814-6090-2019-19-1-2-46-55
Uteshev V. K., Gakhova E. N., Kramarova L. I., Shishova N. V., Kaurova S. A., Penkov N. V. Refrigerated storage of oviductal oocytes into live females common frog Rana temporaria from 1 to 70 days. Russian Journal of Herpetology, 2024, vol. 31, no. 4. pp. 239–245. https://doi.org/10.30906/1026-2296-2024-31-4-239-245
Yánez-Ortiz I., Catalán J., Rodríguez-Gil J. E., Miró J., Yeste M. Advances in sperm cryopreservation in farm animals: Cattle, horse, pig and sheep. Animal Reproduction Science, 2022, vol. 246, pp. 106–115. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2021.106904
