Сообщение об ошибке
Notice: Undefined index: und в функции citing_article_block_content() (строка 196 в файле /fs/www/izvestiya/sites/all/modules/custom/citing_an_article/citing_an_article.module).Образец для цитирования:
Гагаринский Е. Л., Утешев В. К., Фесенко Е. Е. Хранение яйцеклеток травяной лягушки, Rana temporaria (Ranidae, Amphibia), под давлением газовой смеси монооксида углерода и кислорода // Современная герпетология. 2025. Т. 25, вып. 3. С. 159-164. DOI: https://doi.org/10.18500/1814-6090-2025-25-3-4-159-164
Хранение яйцеклеток травяной лягушки, Rana temporaria (Ranidae, Amphibia), под давлением газовой смеси монооксида углерода и кислорода
Разработка технологии гипотермической консервации ооцитов амфибий является одной из актуальных задач для криобиологии. Предложенный нами ранее способ «сухой» гипотермической консервации в закрытых бюксах позволил увеличить длительность рефрижераторного хранения неоплодотворенных ооцитов травяной лягушки, Rana temporaria до 7 суток (оплодотворено – 40%, выклев – 20%). Целью данного исследования являлось повышение эффективности предложенного ранее подхода при помощи технологии хранения биологических объектов под давлением газовой смеси (СО+О2), применяемой обычно для органов теплокровных животных. В группе «СО+О2 6.5 атм.» снижение качества сохраняемых ооцитов происходило лишь на 7-е сутки хранения. Количество фертильных ооцитов (91±8%) и личинок (80±14%) на сроках консервации до 4 суток включительно в группе «СО+О2 6.5 атм.» достоверно не отличалось от значений, полученных в группе нативного контроля 95+4 и 91±5% соответственно. На 7-е сутки консервации в группе «СО+О2 6.5 атм.» наблюдали резкое снижение показателей выклева до результатов контрольной группы. Серия дополнительных экспериментов показала, что снижение давления с 6.5 до 2.5 избыточных атмосфер повысило фертильность с 34±21% в группе «СО+О2 6.5 атм.» до 68±8% в группе «СО+О2 2.5 атм.», а количество личинок – с 12±11 до 23±10% при семидневной консервации ооцитов. Предложенная технология газовой консервации, использующая смесь СО+О2, пролонгирует гипотермическое хранение ооцитов амфибий на срок до 12-ти суток. Рекомендуемое давление газовой смеси в камере составляет 2.5 избыточных атмосфер.
Кидов А. А., Кидова Е. А., Дроздова Л. С., Вяткин Я. А., Иволга Р. А., Кондратова Т. Э., Африн К. А., Иванов А. А. 2021. Обзор методик зоокультуры редких и исчезающих земноводных России и сопредельных стран: опыт Тимирязевской академии // Труды Института зоологии Республики Казахстан. Т. 1, вып. 1. С. 89 – 104. https://doi.org/10.54944/oc260ot24
Фесенко Е. Е., Гагаринский Е. Л., Аверин А. С., Грудинин Н. В., Гурин А. Е., Шишова Н. В., Швирст Н. Э., Гольтяев М. В., Ковтун А. Л. 2020. Оценка сохранности миокарда крысы и изолированного сердца барана после пролонгированной 24-часовой гипотермической консервации под давлением газовой смеси на основе монооксида углерода // Биофизика. Т. 65, вып. 4. С. 780 – 791. https://doi.org/10.31857/ S0006302920040213
Catenazzi A. 2005. State of the world's amphibians // Annual Review of Environment and Resources. Vol. 40, № 1. Р. 91 – 119. https://doi.org/10.1146/annurev-environ-102014-021358
McCallum M. L. 2007. Amphibian decline or extinction? Current declines dwarf background extinction rate // Journal of Herpetology. Vol. 41, № 3. Р. 483 – 491. https://doi.org/10.1670/0022-1511(2007)41[483:ADOECD]2.0.CO;2
Nagamatsu G., Shimamoto S., Hamazaki N., Nishimura Y., Hayashi K. 2019. Mechanical stress accompanied with nuclear rotation is involved in the dormant state of mouse oocytes // Science Advances. Vol. 5, iss. 6. Article no. eaav9960. https://doi.org/10.1126/sciadv.aav9960
Němeček D., Dvořáková M., Heroutová I., Chmelíková E., Sedmíková M. 2017. Anti-apoptotic properties of carbon monoxide in porcine oocyte during in vitro aging // PeerJ. Vol. 5. Article no. e3876 https://doi.org/10.7717/peerj.3876
Queiroga C. S., Almeida A. S., Martel C., Brenner C., Alves P. M., Vieira H. L. 2010. Glutathionylation of adenine nucleotide translocase induced by carbon monoxide prevents mitochondrial membrane permeabilization and apoptosis // Journal of Biological Chemistry. Vol. 285, iss. 22. Р. 17077 – 17088. https://doi.org/10.1074/ jbc.M109.065052
Pribenszky C., Molnár M., Cseh S., Solti L. 2005. Improving post-thaw survival of cryopreserved mouse blastocysts by hydrostatic pressure challenge // Animal Reproduction Science. Vol. 87, iss. 1 – 2. P. 143 – 150. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2004.09.007
Sato K. I., Tokmakov A. A. 2020. Toward the understanding of biology of oocyte life cycle in Xenopus laevis: No oocytes left behind // Reproductive Medicine and Biology. Vol. 19, iss. 2. Р. 114 – 119. https://doi.org/10.1002/rmb2.12314
Tök L., Nazıroğlu M., Uğuz A. C., Tök O. 2014. Elevated hydrostatic pressures induce apoptosis and oxidative stress through mitochondrial membrane depolarization in PC12 neuronal cells: A cell culture model of glaucoma // Journal of Receptors and Signal Transduction. Vol. 34, iss. 5. Р. 410 – 416. https://doi.org/10.3109/ 10799893.2014.910812
Uteshev V. K., Gakhova E. N., Kramarova L. I., Shishova N. V., Kaurova S. A. 2019. New approaches to collecting reproductive material from amphibians for its use in artificial fertilization // Current Studies in Herpetology. Vol. 19, iss. 1–2. P. 46 – 55.
