Для цитирования:
Каурова С. А., Шишова Н. В., Утешев В. К. Гипотермическое хранение уринальной спермы бесхвостых амфибий с антибиотиками: современное состояние проблемы Современная герпетология. 2026. Т. 26, вып. 1. С. 52-58. DOI: 10.18500/1814-6090-2026-26-1-2-52-58, EDN: SYERPW
Гипотермическое хранение уринальной спермы бесхвостых амфибий с антибиотиками: современное состояние проблемы
В связи с шестым массовым вымиранием животных особую актуальность приобретают программы сохранения и разведения амфибий – наиболее уязвимой группы позвоночных. Ключевой проблемой при применении вспомогательных репродуктивных технологий у бесхвостых амфибий остается асинхронность созревания гамет у самцов и самок, которую можно нивелировать разработкой эффективных протоколов хранения спермы. В настоящем обзоре обобщены и проанализированы результаты исследований, посвященных влиянию антибиотиков на сохранность сперматозоидов бесхвостых амфибий при гипотермическом хранении (0 – 5°C). Показано, что первоначальные неудачи при использовании антибиотиков для хранения уринальной спермы бесхвостых амфибий были связаны с использованием высоких, токсичных для сперматозоидов концентраций антибиотиков (1 – 4 мг/мл). Установлено, что применение антибиотиков широкого спектра дейс-вия (гентамицин, стрептомицин, энрофлоксацин) в более низких дозах (до 1 мг/мл) способствует подавлению бактериального роста и значительному увеличению продолжительности жизни сперматозоидов – до 1.5 месяцев для Rana temporaria и 2 недель для Bufo bufo, с сохранением их подвижности и оплодотворяющей способности. Наиболее эффективным из изученных препаратов признан гентамицин в концентрациях 0.1 – 0.4 мг/мл. Дальнейшие перспективы исследований по гипотермическому хранению уринальной спермы амфибий включают оптимизацию протоколов хранения с учетом видовых особенностей, поиск новых нетоксичных антимикробных агентов и изучение комбинированных препаратов антибиотиков.
- Ananjeva N. B., Uteshev V. K., Orlov N. L., Ryabov S. A., Gakhova E. N., Kaurova S. A., Kramarova L. I., Shishova N. V., Browne R. K. Comparison of the modern reproductive technologies for amphibians and reptiles. Russian Journal of Herpetology, 2017, vol. 24, no. 4, pp. 275–290. https://doi.org/10.30906/1026-2296-2017-24-4-275-290
- Anastas Z. M., Byrne P. G., Silla A. J. Characterisation of the urinary microbiome of a frog, and the effect of antibiotics on bacterial abundance and sperm viability during refrigerated storage. Frontiers in Amphibian and Reptile Science, 2024, vol. 2, art. 1329888. https://doi.org/10.3389/famrs.2024.1329888
- Anastas Z. M., Byrne P. G., O’Brien J. K., Hobbs R. J., Upton R., Silla A. J. The increasing role of short-term sperm storage and cryopreservation in conserving threatened amphibian species. Animals, 2023, vol. 13, no. 13, art. 2094. https://doi.org/10.3390/ani13132094
- Browne R. K., Silla A. J., Upton R., Della-Togna G., Marcec-Greaves R., Shishova N. V., Uteshev V. K., Proaño B., Pérez O. D., Mansour N., Kaurova S. A., Gakhova E. N., Cosson J., Dyzuba B., Kramarova L. I., McGinnity D., Gonzalez M., Clulow J., Clulow S. Sperm collection and storage for the sustainable management of amphibian biodiversity. Theriogenology, 2019, vol. 133, pp. 187–200. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2019.03.035
- Browne R. K., Luo Q., Wang P., Mansour N., Kaurova S. A., Gakhova E. N., Shishova N. V., Uteshev V. K., Kramarova L. I., Venu G., Bagaturov M. F., Vaissi S., Heshmatzad P., Janzen P., Swegen A., Strand J., McGinnity D. The sixth mass extinction and amphibian species sustainability through reproduction and advanced biotechnologies, biobanking of germplasm and somatic cells, and conservation breeding programs (RBCs). Animals, 2024, vol. 14, no. 23, art. 3395. https://doi.org/10.3390/ani14233395
- Colombo B. M., Scalvenzi T., Benlamara S., Pollet N. Microbiota and mucosal immunity in amphibians. Frontiers in Immunology, 2015, vol. 6, art. 111. https://doi.org/10.3389/fimmu.2015.00111
- Germano J. M., Arregui L., Kouba A. J. Effects of aeration and antibiotics on short-term storage of Fowler’s toad (Bufo fowleri) sperm. Aquaculture, 2013, vol. 396–399, pp. 20–24. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2013.02.018
- IUCN. The IUCN Red List of Threatened Species). Version 2024-2. 2024. Available at: https://www.iucnredlist.org (accessed January 17, 2025).
- Kaurova S. A., Browne R. K., Uteshev V. K. Antibiotics for the refrigerated storage at 4ºC of hormonally induced European сommon frog (Rana temporaria) spermatozoa. Theriogenology Wild, 2022, vol. 1, art. 100009. https://doi.org/10.1016/j.therwi.2022.100009
- Kaurova S. A., Uteshev V. K., Shishova, N. V. Effect of antibiotics metranidazole, streptomycin, and gentamicin on the maintenance of sperm motility of the European common Frog (Rana temporaria) during refrigerated storage. Russian Journal of Herpetology, 2024a, vol. 31, no. 1, pp. 47–55. https://doi.org/10.30906/1026-2296-2024-31-1-47-55
- Kaurova S. A., Shishova N. V., Uteshev V. K. The effect of gentamicin on the motility of hormonally induced spermatozoa of Toad Bufo bufo during storage at 4°C. Bulletin of Experimental Biology and Medicine, 2024b, vol. 176, iss. 5, pp. 816–819. https://doi.org/10.1007/s10517-024-06115-x
- Keogh L. M., Byrne P. G., Silla A. J. The effect of gentamicin on sperm motility and bacterial abundance during chilled sperm storage in the Booroolong frog. General and Comparative Endocrinology, 2017, vol. 243, pp. 51–59. https://doi.org/10.1016/j.ygcen.2016.11.005
- Kohl K. D., Cary T. L., Karasov W. H., Dea-ring M. D. Restructuring of the amphibian gut microbiota through metamorphosis. Environmental Microbiology Reports, 2013, vol. 5, iss. 6, pp. 899–903. https://doi.org/10.1111/1758-2229.12092
- Kouba A. J., Vance C. K. Applied reproductive technologies and genetic resource banking for amphibian conservation. Reproduction, Fertility and Development, 2009, vol. 21, iss. 6, pp. 719–736. https://doi.org/10.1071/RD09038
- Rahimi R., Hajirezaee S., Shaluei F., Katadj J. K. Antibiotics, penicillin and sreptomycin improve semen quality indices of endangered Caspian brown trout, Salmo trutta caspius (Kessler 1870) during in vitro short-term storage. Aquaculture Research, 2015, vol. 47, iss. 1, pp. 3662–3666. https://doi.org/10.1111/are.12819
- Saad A., Billard R., Theron M. C., Hollebecq M. G. Short-term preservation of carp (Cyprinus carpio) semen. Aquaculture, 1988, vol. 71, iss. 1-2, pp. 133–150. https://doi.org/10.1016/0044-8486(88)90280-3
- Santos C. S., Campos L. B., Praxedes É., Moreira S., Souza-Júnior J., Comizzoli P., Feijó F. M. C., Silva A. R. Influence of antibiotics on bacterial load and sperm parameters during short-term preservation of collared peccary semen. Animal Reproduction, 2021, vol. 18, no. 3, art. 20210021. https://doi.org/10.1590/1984-3143-AR2021-0021
- Silla A. J., Keogh L. M., Byrne P. G. Antibiotics and oxygen availability affect the short-term storage of spermatozoa from the critically endangered booroolong frog, Litoria booroolongensis. Reproduction, Fertility and Development, 2015, vol. 27, iss. 8, pp. 1147–1153. https://doi.org/10.1071/RD14062
- Upton R., Calatayud N. E, Clulow S., Brett D., Burton A. L., Colyvas K., Mahony M., Clulow J. Refrigerated storage and cryopreservation of hormonally induced sperm in the threatened frog, Litoria aurea. Animal Reproduction Science, 2024, vol. 262, art. 107416. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2024.107416
- Uteshev V. K., Gakhova E. N., Kramarova L. I., Shishova N. V., Kaurova S. A., Kidova E. A., Kidov A. A., Browne R. K. Russian collaborative development of reproduction technologies for the sustainable management of amphibian biodiversity. Asian Herpetological Research, 2023, vol. 14, no.1, pp. 103–115. https://doi.org/10.16373/j.cnki.ahr.220043