Образец для цитирования:

Кидов А. А., Немыко Е. А. Лабораторное размножение альпийского тритона, Ichthyosaura alpestris (Laurenti, 1768) (Amphibia, Caudata, Salamandridae) с применением гормональной стимуляции // Современная герпетология. 2019. Т. 19, вып. 1-2. С. 31-39. DOI: https://doi.org/10.18500/1814-6090-2019-19-1-2-31-39


Рубрика: 
УДК: 
591.16:597.8

Лабораторное размножение альпийского тритона, Ichthyosaura alpestris (Laurenti, 1768) (Amphibia, Caudata, Salamandridae) с применением гормональной стимуляции

Аннотация

Альпийский тритон, Ichthyosaura alpestris широко распространен в Центральной Европе. На большей части своего распространения он обычен. В Украине, Венгрии, Болгарии, Австрии и Дании этот вид редок. В Нидерландах, Бельгии и Люксембурге альпийский тритон под угрозой исчезновения. Известно большое число работ по содержанию и разведению данного вида в неволе. Это позволяет сохранять альпийского тритона в искусственных условиях, а также осуществлять работы по реинтродукции. В зоокультуре амфибий все большее распространение получают современные методы интенсификации процессов размножения. Одним из таких методов является гормональная стимуляция полового созревания и репродуктивного поведения. В России наиболее часто исполь-зуют синтетический аналог ганадотропного гипоталамического нейрогормона люлеберина (сурфагон). Применение инъекций этого препарата позволило получить потомство от десятков видов земноводных. В данной статье представлены результаты лабораторного размножения альпийского тритона при помощи сурфагона. Тритоны бы-ли отловлены в Ивано-Франковской области Украины. В последующем животных содержали парами в пластиковых контейнерах с водой. Кормили животных личинками хирономид (мотыль). В контейнеры с тритонами поме-щали живой яванский мох, Vesicularia dubyana. После 10 месяцев содержания животных осуществляли гормональную стимуляцию размножения. Раствор сурфагона (по 12.5 мг действующего вещества на одного тритона) вводили в брюшную полость один раз в начале февраля. Самки начали откладывать яйца через 1 – 3 суток после инъекции. Случаи откладки яиц были отмечены при температуре воды от 5.0 до 22.5°C. Весь период икрометания (от первого найденного яйца до последнего) составил 44 – 92 суток. Всего самки откладывали 141 – 268 яиц. В феврале и марте размножались все пять самок, в апреле – четыре, в мае – только три. Длина яиц составляла 3.0 – 4.5 мм, а ширина – 2.0 – 3.9 мм. Предличинки выходили из яиц через 8 – 13 суток. Общая длина предличинки равнялась 7.8 – 11.4 мм. Личинок кормили живыми науплиусами артемии, Artemia salina, а позднее – мотылем. Молодые тритоны начинали выходить на сушу через 88 – 96 суток. Отдельные личинки не проходили метаморфоз даже после 10 месяцев выращивания. Общая длина тела с хвостом у молодых тритонов равнялась 27.3 – 43.2 мм, а масса – 0.13 – 0.45 г. Авторы отмечают, что применение одной инъекции сурфагона позволило получать яйца от альпийских тритонов уже с начала февраля, т. е. существенно ранее природных сроков размножения. В дальнейшем из этих яиц удалось вырастить молодых тритонов жизнестойких стадий. Полученные результаты позволяют рекомендовать использование гормональной стимуляции для ускорения воспроизводства у альпийских тритонов в искусственных условиях.

Библиографический список

Ананьева Н. Б., Боркин Л. Я., Даревский И. С., Орлов Н. Л. 1998. Земноводные и пресмыкающиеся. Энциклопедия природы России. М. : ABF. 576 с.
Гончаров Б. Ф., Сербинова И. А., Утешев В. К., Шубравый О. И. 1989. Разработка методов гормональной стимуляции процессов размножения у амфибий // Проблемы доместикации животных / Ин-т эволюционной морфологии и экологии животных им. А. Н. Северцова АН СССР. М. С. 197 – 201.
Кидов А. А., Сербинова И. А. 2008. Опыт разведения кавказской жабы Bufo verrucosissimus (Pallas, [1814]) (Amphibia, Anura, Bufonidae) в лабораторных условиях // Актуальные проблемы экологии и сохранения биоразнообразия : материалы Всерос. конф. Владикавказ : Изд-во Сев.-Осет. ИГСИ им. В. И. Абаева. С. 49 – 53.
Кидов А. А., Матушкина К. А., Африн К. А. 2015 а. Первые результаты лабораторного размножения и реинтродукции тритона Карелина, Triturus karelinii Strauch, 1870 талышской популяции // Вестн. Бурят. гос. ун-та. № 4. С. 81 – 89.
Кидов А. А., Матушкина К. А., Блинова С. А., Африн К. А., Коврина Е. Г., Бакшеева А. А. 2015 б. Размножение гирканской лягушки (Rana macrocnemis pseudodalmatina Eiselt et Schmidtler, 1971) в лабораторных условиях // Современная герпетология. Т. 15, вып. 3/4. С. 109 – 113.
Кидов А. А., Матушкина К. А., Литвинчук С. Н., Блинова С. А., Африн К. А., Коврина Е. Г. 2016. Первый случай размножения жабы Латаста, Bufotes latastii (Boulenger, 1882) в лабораторных условиях // Современная герпетология. Т. 16, вып. 1/2. С. 20 – 26.
Кидов А. А., Матушкина К. А., Блинова С. А., Африн К. А. 2017. Лабораторное размножение кубинской жабы (Peltophryne empusa Cope, 1862) // Совре-менная герпетология. Т. 17, вып. 1/2. С. 36 – 43.
Кузьмин С. Л. 2012. Земноводные бывшего СССР. М. : Т-во науч. изд. КМК. 370 с.
Литвинчук С. Н., Боркин Л. Я. 2009. Эволюция, систематика и распространение гребенчатых тритонов (Triturus cristatus complex) на территории России и сопредельных стран. СПб. : Европейский дом. 592 с.
Матушкина К. А., Кидов А. А., Литвинчук С. Н. 2017. Первые  результаты лабораторного размножения батурской жабы, Bufotes baturae Stoeck, Schmid, Steinlein et Grosse, 1999 // Вестн. Тамб. гос. ун-та. Сер. Естественные и технические науки. Т. 22, № 5. С. 955 – 959.
Писанец Е. М. 2007. Амфибии Украины (справочник-определитель земноводных Украины и сопредельных территорий). Киев : Зоомузей ННПМ НАН Украины. 312 с.
Писанец Е. М., Литвинчук С. Н., Куртяк Ф. Ф., Радченко В. И. 2005. Земноводные красной книги Ук-раины (справочник-кадастр). Киев : Зоомузей ННПМ НАН Украины. 230 с.
Сербинова И. А. 2007. Реинтродукция как ме-тод сохранения диких амфибий // Научные исследования в зоологических парках. Вып. 22. С. 113 – 117.
Сербинова И. А., Туниев Б. С. 1986. Содержа-ние, разведение и реинтродукция малоазиатского тритона (Triturus vittatus) // I Всесоюз. совещ. по проблемам зоокультуры : тез. докл. : в 3 ч. М. Ч. 2. С. 147 – 150.
Сербинова И. А., Туниев Б. С., Утешев В. К., Шубравый О. И., Гончаров Б. Ф. 1990 а. Создание поддерживаемой в искусственных условиях популяции малоазиатского тритона (Triturus vittatus ophryticus) // Зоокультура амфибий / Ин-т эволюционной морфологии и экологии животных им. А. Н. Северцова АН СССР. М. С. 75 – 81.
Сербинова И. А., Шубравый О. И., Утешев В. К., Агасян А. Л., Гончаров Б. Ф. 1990 б. Содержание, разведение в неволе и создание новых природных популяций сирийской чесночницы (Pelobates syriacus Boettger) // Зоокультура амфибий / Ин-т эволюционной морфологии и экологии животных им. А. Н. Северцова АН СССР. М. С. 82 – 89.
Утешев В. К., Каурова С. А., Шишова Н. В., Манохин А. А., Мельникова Е. Г., Гахова Э. Н. 2013 а. Современные технологии разведения амфибий // Праці Українського герпетологічного товариства. № 4. С. 175 – 183.
Утешев В. К., Кидов А. А., Каурова С. А., Шишова Н. В. 2013 б. Первый опыт размножения тритона Карелина, Triturus karelinii (Strauch, 1870) с использованием оплодотворения икры уринальной спермой // Вестн. Тамб. гос. ун-та. Сер. Естественные и технические науки. Т. 18, № 6-1. С. 3090 – 3092.
Утешев В. К., Кидов А. А., Каурова С. А., Шишова Н. В., Ковалев А. В. 2013 в. Сравнительная характеристика уринальной спермы трех видов палеарктических бурых лягушек // Вестн. Тамб. гос. ун-та. Сер. естественные и технические науки. Т. 18, № 6-1. С. 3087 – 3090.
Ananjeva N. B., Orlov N. L., Uteshev V. K., Gakhova E. N. 2015. Strategies for conservation of endangered amphibian and reptile species // Biology Bulletin. Vol. 42, № 5. P. 432 – 439.
Ananjeva N. B., Uteshev V. K., Orlov N. L., Rya-bov S. A., Gakhova E. N., Kaurova S. A., Kramarova L. I., Shishova N. V., Browne R. K.  2017. Comparison of the modern reproductive technologies for amphibians and rep-tiles // Russ. J. of Herpetology. Vol. 24, № 4. P. 275 – 290.
Arntzen J. W., King T. M., Denoël M., Martínez-Solano I., Wallis G. P. 2016. Provenance of Ichthyosaura alpestris (Caudata : Salamandridae) introductions to France and New Zealand assessed by mitochondrial DNA analysis // Herpetological J. Vol. 26. P. 49 – 56.
Bell B. D., Bell A. P. 1995. Distribution of the in-troduced alpine newt Triturus alpestris and of native Triturus species in north Shropshire, England // Australian J. of Ecology. Vol. 20. P. 367 – 375.
Dubois A., Raffaëlli J. 2009. A new ergotaxonomy of the family Salamandridae Goldfuss, 1820 (Amphibia, Urodela) // Alytes. Vol. 26. P. 1 – 85.
Goncharov B. F., Shubravy O. I., Serbinova I. A., Uteshev V. K. 1989. The USSR programme for breeding amphibians, including rare and endangered species // International Zoo Yearbook. Vol. 28. P. 10 – 21.
Kidov A. A., Matushkina K. A., Uteshev V. K., Timoshina A. L., Kovrina E. G. 2014. The first captive breeding of the Eichwald’s toad (Bufo eichwaldi) // Russ. J. of Herpetology. Vol. 21, № 1. P. 40 – 46.
Kinne O. 2006. Successful reintroduction of the newts Triturus cristatus and T. vulgaris // Endangered Species Research. Vol. 1. P. 25 – 40.
Raffaëlli J. 2013. Les Urodèles du Monde. Deuxième Édition. Plumelec : Penclen. 480 p.
Shishova N. R., Uteshev V. K., Kaurova S. A., Browne R. K., Gakhova E. N. 2011. Cryopreservation of hormonally induced sperm for the conservation of threatened amphibians with Rana temporaria as a model research species // Theriogenology. Vol. 75, № 2. P. 220 – 222.
Shubravy O. I., Uteshev V. K., Serbinova I. A., Goncharov B. F. 1991. Über die Tätigkeit einer Arbeitsgruppe zur Vermehrung seltener, vom Aussterben bed-rohter und problematischer Amphibienarten in Menschenhand (Vortragsmanuskript) // Amphibienforschung und Vivarium. S. 20 – 21.

Краткое содержание (на английском языке): 
Полный текст в формате PDF (на русском языке): 
Номер страницы (по): 
39.00